ドロップレットオイル 008-FluoroSurfactant

008-FluoroSurfactantの製品概要

008-FluoroSurfactantは、ドロップレット作製に用いられるフッ素系界面活性剤です。ハーバード大学のDavid Weitz教授の研究グループによって開発され、RAN Biotechnologies社によって製造されています。

さまざまなエマルジョンやドロップレットの作製において、エマルジョンおよびその内容物を安定的に保持します。PCRのサーマルサイクリングや長期保存などの厳しい条件下でも高い安定性を示し、生物学的実験にも適していることから、世界中の研究者に利用されています。また、多数の学術論文で採用・報告された実績があります。

HFE-7500などのフッ素系オイルに溶解済みの製品のほか、任意の濃度に調製可能な原液バイアルパックもご用意しています。OEM供給やプライベートブランド製品にも対応しておりますので、お気軽にお問い合わせください。

008-FluoroSurfactantの商品一覧/価格・納期情報

※2026年7月1日現在のものであり、すべて参考情報です。
※内容は、予告なく変更される場合があります。
※商流、時期、在庫状況などによって変わるため都度お見積依頼ください。
※別途送料(税抜)1,800円/箱（北海道、沖縄は、別料金）を頂いております。

※008-FluoroSurfactantは、RAN Biotechnologies社製です。
※Pico-Surf ™は、Sphere Bio社の商標です。
※Novec ™は、3M社の商標です。
※試験研究用試薬です。

008 FluoroSurfactant Q&A

Q：ヒートサイクル後にドロップレットの融合や崩壊が見られる場合、どうすればよいですか？

A：ドロップレット安定剤である界面活性剤の濃度を高くすることで改善する場合があります。通常2％品をご使用の場合は、5％品をお試しください。

Q：ドロップレットがうまく生成できません。どうすればよいですか？

A：ドロップレット生成を成功させるには、マイクロ流路チップ、流体制御条件、試薬組成などの界面化学的条件を適切に最適化することが重要です。一概には言えませんが、界面活性剤濃度を高くすることで改善する場合があります。通常2％品をご使用の場合は、5％品をお試しください。

Q：ドロップレットを生成する装置やチップはありますか？

A：NTサイエンスでは、ドロップレットジェネレーターおよび各種マイクロ流体チップを提供しております。また、お客様の用途に応じたカスタム対応も可能です。装置、チップ、アプリケーションを含めたソリューションにご興味がございましたら、お気軽にお問い合わせください。

008-FluoroSurfactant商品カタログ

マイクロドロップレット生成試薬 008-FluoroSurfactant

ドロップレットジェネレーター

マイクロハイドロゲル粒子作製の様子

両側から交差する均一な油相の流れにより、均一なサイズの水相ドロップレットを形成します。ドロップレット形成直前に2液を混合できるマイクロ流体チップのため、細胞を封入したハイドロゲル粒子の作製や、三次元細胞培養、バイオアッセイ開発などの用途にも適しています。

注意事項

※試験研究用試薬です。

本製品は、官公立・民間を問わず、学校、研究所、試験所、検査機関等における試験、実験、研究、開発、検査などに使用される試験研究用試薬です。これらの用途以外にはご使用いただけません。また、一部であっても商業目的で他の化学物質または製品の製造に使用される場合は、お取り扱いできません。試験研究の実施主体はお客様ご自身に限らず、エンドユーザー様である場合も含まれます。そのため、ご注文の際にはエンドユーザー様および用途を確認させていただく場合があります。

お問い合わせ

008-Fluorosurfactant製品使用事例

• Ackerman, Cheri M et al. “Massively multiplexed nucleic acid detection with Cas13.” Nature vol. 582,7811 (2020): 277-282. doi:10.1038/s41586-020-2279-8
• Baichman-Kass, Amichai et al. “Competitive interactions between culturable bacteria are highly non-additive.” eLife vol. 12 e83398. 28 Feb. 2023, doi:10.7554/eLife.83398
• De Jonghe, Joachim et al. “spinDrop: a droplet microfluidic platform to maximise single-cell sequencing information content.” Nature communications vol. 14,1 4788. 8 Aug. 2023, doi:10.1038/s41467-023-40322-w
• Gérard, Annabelle et al. “High-throughput single-cell activity-based screening and sequencing of antibodies using droplet microfluidics.” Nature biotechnology vol. 38,6 (2020): 715-721. doi:10.1038/s41587-020-0466-7
• Haller, B., Göpfrich, K., Schröter, M., Janiesch, J.-W., Platzman, I., & Spatz, J. P. (2018). Charge-controlled microfluidic formation of lipid-based single- and multicompartment systems. Lab on a Chip, 18(17), 2665-2674. https://doi.org/10.1039/C8LC00582F
• Hatori, Makiko N et al. “Dual-layered hydrogels allow complete genome recovery with nucleic acid cytometry.” Biotechnology journal vol. 17,4 (2022): e2100483. doi:10.1002/biot.202100483
• Hattori, Kazuki et al. “Droplet Array-Based Platform for Parallel Optical Analysis of Dynamic Extracellular Vesicle Secretion from Single Cells.” Analytical chemistry vol. 94,32 (2022): 11209-11215. doi:10.1021/acs.analchem.2c01609
• Imai, Ryo, and Hideaki Kano. “Label-free enzymatic reaction monitoring in water-in-oil microdroplets using ultra-broadband multiplex coherent anti-Stokes Raman scattering spectroscopy.” Biomedical optics express vol. 13,3 1506-1515. 15 Feb. 2022, doi:10.1364/BOE.449914
• Jang, Minjeong et al. “Droplet-based microtumor model to assess cell-ECM interactions and drug resistance of gastric cancer cells.” Scientific reports vol. 7 41541. 27 Jan. 2017, doi:10.1038/srep41541
• Khan, Anowar H et al. “Generation of 3D Spheroids Using a Thiol-Acrylate Hydrogel Scaffold to Study Endocrine Response in ER+ Breast Cancer.” ACS biomaterials science & engineering vol. 8,9 (2022): 3977-3985. doi:10.1021/acsbiomaterials.2c00491
• Kim, Samuel C et al. “Single-Cell RT-PCR in Microfluidic Droplets with Integrated Chemical Lysis.” Analytical chemistry vol. 90,2 (2018): 1273-1279. doi:10.1021/acs.analchem.7b04050
• Klein, Allon M et al. “Droplet barcoding for single-cell transcriptomics applied to embryonic stem cells.” Cell vol. 161,5 (2015): 1187-1201. doi:10.1016/j.cell.2015.04.044
• Lan, Freeman et al. “Single-cell genome sequencing at ultra-high-throughput with microfluidic droplet barcoding.” Nature biotechnology vol. 35,7 (2017): 640-646. doi:10.1038/nbt.3880
• Laurent, Julie M et al. “Directed evolution of material-producing microorganisms.” Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America vol. 121,31 (2024): e2403585121. doi:10.1073/pnas.2403585121
• Luo, Siwei et al. “ATLAS-seq: a microfluidic single-cell TCR screen for antigen-reactive TCRs.” Nature communications vol. 16,1 216. 2 Jan. 2025, doi:10.1038/s41467-024-54675-3
• Malic L, Clime L, Moon BU, Nassif C, Da Fonte D, Brassard D, Lukic L, Geissler M, Morton K, Charlebois D, Veres T. Sample-to-answer centrifugal microfluidic droplet PCR platform for quantitation of viral load. Lab Chip. 2024;24(20):4755-4765. doi:10.1039/D4LC00533C.
• Potenza, Luca et al. “Passive Droplet Microfluidic Platform for High-Throughput Screening of Microbial Proteolytic Activity.” Analytical chemistry vol. 96,40 (2024): 15931-15940. doi:10.1021/acs.analchem.4c02979
• Rajan, Saravanan et al. “Recombinant human B cell repertoires enable screening for rare, specific, and natively paired antibodies.” Communications biology vol. 1 5. 22 Jan. 2018, doi:10.1038/s42003-017-0006-2
• Ribeiro, Ana L J L et al. “Thermostable in vitro transcription-translation compatible with microfluidic droplets.” Microbial cell factories vol. 23,1 169. 10 Jun. 2024, doi:10.1186/s12934-024-02440-y
• Rutkauskaite, Justina et al. “High-throughput single-cell antibody secretion quantification and enrichment using droplet microfluidics-based FRET assay.” iScience vol. 25,7 104515. 2 Jun. 2022, doi:10.1016/j.isci.2022.104515
• Samlali K, Alves CL, Jezernik M, Shih SCC. Droplet digital microfluidic system for screening filamentous fungi based on enzymatic activity. Microsyst Nanoeng. 2022;8:123. Published 2022 Nov 21. doi:10.1038/s41378-022-00456-1
• Samy, Karen E et al. “Human intestinal spheroids cultured using Sacrificial Micromolding as a model system for studying drug transport.” Scientific reports vol. 9,1 9936. 9 Jul. 2019, doi:10.1038/s41598-019-46408-0
• Schaerli, Yolanda. “Bacterial Microcolonies in Gel Beads for High-throughput Screening.” Bio-protocol vol. 8,13 (2018): e2911. doi:10.21769/BioProtoc.2911
• Staskiewicz, Klaudia et al. “Droplet microfluidic system for high throughput and passive selection of bacteria producing biosurfactants.” Lab on a chip vol. 24,7 1947-1956. 26 Mar. 2024, doi:10.1039/d3lc00656e
• Tompkins, Nathan et al. “Testing Turing’s theory of morphogenesis in chemical cells.” Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America vol. 111,12 (2014): 4397-402. doi:10.1073/pnas.1322005111
• Tu R, Zhang Y, Hua E, et al. Droplet-based microfluidic platform for high-throughput screening of Streptomyces. Commun Biol. 2021;4(1):647. Published 2021 May 31. doi:10.1038/s42003-021-02186-y
• Zheng, Wenshan et al. “High-throughput, single-microbe genomics with strain resolution, applied to a human gut microbiome.” Science (New York, N.Y.) vol. 376,6597 (2022): eabm1483. doi:10.1126/science.abm1483
• Vanhoucke T, Perima A, Zolfanelli L, Bruhns P, Broketa M. Deep learning enabled label-free microfluidic droplet classification for single cell functional assays. Front Bioeng Biotechnol. 2024;12:1468738. doi:10.3389/fbioe.2024.1468738.
• Welch NL, Zhu M, Hua C, et al. Multiplexed CRISPR-based microfluidic platform for clinical testing of respiratory viruses and identification of SARS-CoV-2 variants [published correction appears in Nat Med. 2024 Jan;30(1):307. doi: 10.1038/s41591-023-02684-y.]. Nat Med. 2022;28(5):1083-1094. doi:10.1038/s41591-022-01734-1
• Wong, Ada Hang-Heng et al. “Drug screening of cancer cell lines and human primary tumors using droplet microfluidics.” Scientific reports vol. 7,1 9109. 22 Aug. 2017, doi:10.1038/s41598-017-08831-z